Details

Данная работа посвящена оптимизации процесса культивирования, за счет внесения новых компонентов. В рамках данной работы решены следующие задачи: 1) Проведен анализ зарубежной и отечественной литературы, патенты, диссертационные материалы в базе данных PubMed, ЭБ СПбПУ монографии по теме исследования. 2) Проведены серии экспериментов в колбах на 250 мл и 1000 мл в 6 повторностях, для установления оптимальных параметров культивирования клеток СНО. 3) Апробирована методика с выбранной концентрацией глюкозы в продуктовом биореакторе, проведено сравнение между стандартной схемой культивирования и с изменой концентрацией глюкозы в реакторе. В работе были представлены исследования, на основании которых была проведена оптимизация процесса культивирования клеток СНО, за счет внесения дополнительных компонентов, таких как глюкоза. Подготовлена посевная культура клеток от расконсервации до продуктового биореактора, выбраны режимы культивирования в колбах и биореакторе. Подтверждена воспроизводимость процесса в шести повторностях. Подтверждено количество наработанного терапевтического белка. Перспективы дальнейшего развития: • Применение данных на перфузионных процессах; • Масштабирование процесса на биореакторы большего объема.

This work is devoted to the optimization of the cultivation process by introducing new components. The following tasks were solved as part of this work: 1) An analysis of foreign and domestic literature, patents, dissertation materials in the PubMed, EL SPbPU database, and monographs on the research topic was conducted. 2) A series of experiments was conducted in 250 ml and 1000 ml flasks in 6 replicates to determine the optimal cultivation parameters for CHO cells. 3) The method with the selected glucose concentration in the product bioreactor was tested, and a comparison was made between the standard cultivation scheme and the modified glucose concentration in the reactor. The work presented studies on the basis of which the cultivation process of CHO cells was optimized by introducing additional components, such as glucose. A seed culture of cells was prepared from de-conservation to a product bioreactor, and cultivation modes in flasks and a bioreactor were selected. The reproducibility of the process was confirmed in six repetitions. The amount of therapeutic protein produced was confirmed. Prospects for further development: • Application of data on perfusion processes; • Scaling up the process to larger bioreactors.